ASPECTOS CLAVE EN LA OBTENCION DE MUESTRAS MICROBIOLOGICAS
- Es clave, siempre que sea posible, obtener las muestras antes de iniciar tratamiento antibiótico.
- Obtener las muestras evitando su contaminación con microorganismos de la piel o manos del personal que realiza la obtención de la muestra, usando una técnica de desinfección adecuada.
- Ante cualquier duda, antes de obtener una muestra, consultar con microbiología (teléfono 308138 de 8.00 h. a 20.00 h).
| Indicaciones | Indicaciones | Normas de obtención |
| HEMOCULTIVOS | Todo cuadro febril o de sepsis (o sospecha) en paciente hospitalizado o que va a ingresar.
Fiebre de origen desconocido. Sepsis sin foco o con cualquier focalidad (pielonefritis, meningitis, neumonía, artritis séptica, osteomielitis, infección de piel y tejidos blandos, infección de prótesis, infecciones biliares, otras intra-abdominales, sospecha de abscesos ocultos, fiebre en pacientes con riesgo o sospecha de endocarditis*, etc). |
Realizar siempre 2 extracciones de sangre de venas periféricas en dos punciones DIFERENTES, con un intervalo entre 5-10 y 60 minutos, dependiendo de la situación clínica del paciente.
En adultos, cada extracción será de 20 ml (INOCULAR 10 ml en el frasco de hemocultivo aerobio y 10 ml en el frasco anaerobio). No es aceptable el hemocultivo de una sola toma o extracción de sangre. *REALIZAR 2 EXTRACCIONES DE SANGRE DE PUNCIONES DIFERENTES ANTES DE INICIAR TRATAMIENTO. NUNCA OBTENER LA SANGRE A TRAVES DE CATÉTER SALVO PARA PROTOCOLO BRC. |
| HEMOCULTIVO PARA DIAGNOSTICO DE INFECCIÓN RELACIONADA CON CATÉTER CENTRAL PERMANTENTE
*solo en casos en los que no sea factible la retirada del catéter. |
Sospecha de bacteriemia relacionada con catéter (fiebre sin foco, flebitis, signos de infección en punto de inserción), en paciente con catéter que NO se puede/quiere retirar (porque de lo contrario, lo ideal ante sospecha de BCR es retirar el foco) | Además de las 2 muestras de sangre periférica, se requiere una muestra de sangre 20 ml (10ml en frasco aerobio y 10ml en anaerobio)) obtenida a través de CADA UNA DE LAS LUCES del catéter O CÁMARAS DEL RESERVORIO (señalar a qué corresponde cada una de las muestras y enviar rápidamente al laboratorio). |
| PUNTA DE CATÉTER | Sospecha de infección del catéter. | Enviar siempre junto con hemocultivo convencional (4 frascos). |
| ORINA PARA UROCULTIVO | Sepsis de origen no claro
FOD Sospecha de infección urinaria |
Para la valoración, es imprescindible indicar en la petición si se trata de un paciente sondado, con otro tipo de ITU complicada o si se trata de un paciente inmunodeprimido.
INDICAR SI LA MUESTRA SE HA OBTENIDO POR SONDAJE (ESPECIALMENTE PEDIATRIA) |
| ORINA PARA DETECCIÓN DE MICOBACTERIAS | Sospecha de TBC renal o diseminada. | Se requieren 3 muestras de orina obtenidas en 3 días consecutivos. Volumen mínimo 20 ml. |
| ORINA PARA DETECCIÓN DE ANTÍGENO DE NEUMOCOCO Y LEGIONELLA | Neumonía grave que requiere ingreso.
No solicitar sin evidencia de neumonía (bajo valor predictivo). Legionella solo si sospecha clínica o epidemiológica, o falta de respuesta. |
Obtener siempre junto con un hemocultivo, esputo y/o sangre para serología según patrón radiológico y sospecha clínica. |
| LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO | Meningitis aguda, subaguda y crónica.
Encefalitis. Infecciones de sistemas de derivación de LCR. |
Indicar siempre el diagnóstico clínico de sospecha. Si existe sospecha de infección viral (enterovirus, grupo herpes) o TBC, indicar para hacer las técnicas específicas. |
| ABSCESOS EXUDADOS DE HERIDA ASPIRADO DE VESÍCULAS* |
Abscesos. Infección de heridas. Celulitis. Petequias. Vesículas o flictenas. |
Tomar la muestra tras limpieza y desinfección adecuada.
Siempre que sea posible, obtener la muestra por aspiración e inocularla en frasco Portagerm (no tomarlas con torunda, salvo que no haya otra posibilidad, en este caso, limpiar muy bien la superficie previamente). No son aceptables las muestras enviadas en jeringa. Las muestras obtenidas en torunda son DE MUY MALA CALIDAD. *Si sospecha de infección por VHS, añadir a la muestra medio de transporte de virus (medio UTM que es el mismo que para gripe, torundas con bote de tapón rojo y líquido color rosado) |
| EXUDADO URETRAL/ENDOCERVICAL | ITS EPI |
Obtener 2 TORUNDAS tipo Eswab (torundas con bote de tapón rosa y líquido trasnparente). |
| BIOPSIAS | Introducir la muestra en un contenedor estéril sin conservante. Si sospecha de infección por CMV, añadir a la muestra medio de transporte de virus (mismo medio que para gripe, tapón rojo y liquido rosado). | |
| LÍQUIDOS ESTÉRILES: Pleural pericárdico, ascítico, amniótico, bilis. | Obtener la muestra por aspiración e inocularla en Portagerm o frascos de hemocultivo [2 – 5 ML EN CADA FRASCO (aerobio y anaerobio)] para su envío al laboratorio.
Indicar siempre diagnóstico clínico de sospecha. |
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| HECES | Coprocultivo.
Detección de toxina de Clostridium difficile*. Detección de parásitos**. |
*Enviar la muestra tras su obtención de forma inmediata al laboratorio.
**Usar contenedor específico para parásitos (se puede solicitar en Microbiología). Si sospecha Crypstosporidium es válido el contenedor usado para el coprocultivo. |
| SANGRE-SUERO PARA SEROLOGÍA (TAPÓN ROJO) | Ver indicaciones en protocolo de muestras de serología. | Enviar 10 ml de sangre en tubo de SEROLOGÍA (tapón ROJO)
Para diagnóstico de neumonía atípica y de infección por Rickettsias son necesarias dos muestras de sueros tomadas con 15 días de diferencia. |
| Sangre-Suero (TAPÓN ROJO) | Carga viral VHB, VHC | Mismo tubo que para la serología. |
| Sangre-EDTA (TAPÓN MORADO) | Infección por CMV (Ag precoz y cultivo).
Carga viral VIH-1 y resistencias genotípicas VIH-1, VHB VHC y CMV. |
Tubo con EDTA de 6 mL (tapón morado)
Conservar a Tª ambiente. |
| Sangre-EDTA (TAPÓN MORADO) | Detección de Ag de Plasmodium.
Gota gruesa y frotis (capa fina) para parásitos hemáticos. |
Sospecha de malaria u otros parásitos hemáticos. |
